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(1)复制方法  按30mg/kg体重的剂量经腹腔注射3%戊巴比妥钠麻醉大鼠,根据体重腹部备皮,然后固定于实验台上。将大鼠移近加热自来水的烧杯,将纱布条浸入热水中,待水温恒定于99℃时,取出纱布,立即平铺于待烫部位,以纱布接触大鼠皮肤后计时。(2)模型特点  大体观察:致伤3s大鼠局部皮肤发红、轻微水肿。愈合后毛发生长良好,有少量红褐色色素沉着,皮肤轻微挛缩,表皮光滑。致伤10s大鼠局部皮肤发白、水肿。愈合后毛发生长良好,皮肤瘢痕形成,表面粗糙不平。光镜观察:致伤3s大鼠表皮层次尚清楚,细胞明显肿胀、变性,层次结构尚清楚,细胞核结构不清。表皮内有水疱形成,真皮水肿、间质疏松,胶原纤维断裂,嗜酸性染色性能减退,呈嗜双色性。血管扩张、充血,皮脂腺、汗腺腺上皮细胞及毛囊上皮细胞尚清楚,部分肿胀、溶解。皮下组织中血管扩张、充血。致伤10s大鼠表皮细胞部分脱落,结构不清,明显变性、坏死,部分细胞已溶解。表皮内有水疱形成,真皮层间质疏松、充血,胶原纤维融合成片,嗜酸性染色性能减退,呈嗜双色性,大部分皮脂腺、汗腺、毛囊被破坏,结构不清,真皮深部可见残余毛囊。皮下组织血管扩张、充血、水肿明显,结构未破坏。上述结果表明,致伤3s大鼠为浅Ⅱ度烫伤,致伤10s大鼠为深Ⅱ度烫伤。(3)比较医学  常用的加热铁板、铜板、烫伤器等方法,其致伤部位是一平面,与大鼠弧形的腹部皮肤表面...
发布时间: 2019 - 08 - 08
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(1)复制方法  健康雄性大鼠,体重为230~260g。采用改进的Feeney自由落体硬膜外撞击方法。损伤装置由底板、固定支架、垂直导杆、下落击锤和聚乙烯撞击圆锥组成。撞击圆锥头端直径为4mm、高为2.5mm。经腹腔注射水合氯醛(按350~400mg/kg体重的剂量)或戊巴比妥钠(按50~60mg/kg体重的剂量)麻醉。将其头部固定于立体定向仪上,剪去顶部毛发,手术区域皮肤消毒。沿中线左侧切开头皮,分离骨膜,用牙科钻于中线旁2mm、紧挨冠状缝后开一直径5mm的圆形窗,硬膜保持完整。用20g砝码于10cm和30cm高处通过一金属导杆坠落,撞击置于硬膜上的圆锥上致轻、中型损伤,另用40g砝码于25cm高处坠落致重型损伤。轻、中、重三型损伤的致伤冲击力分别为200g·cm、600g·cm和1000g·cm,用锌汀粉封闭骨窗,缝合头皮,置鼠笼喂养。(2)检测指标1)脑含水量测定  动物断头处死后,30s内取出大脑,用滤纸吸尽脑表面血渍后,锐性分离左侧顶叶皮质约100mg,用电子分析天平称湿重后,置于110℃恒温干燥箱内烤干(24h),称干重。用Elliot公式计算各部位脑含水量百分率:脑含水量(%)=[(湿重-干重)/湿重]×100%2)血脑屏障定量测定  动物于损伤前1h注射2%伊文斯蓝(3ml/kg体重)。在取脑组织...
发布时间: 2019 - 08 - 07
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在还没有开始培养它们之前,你就需要做好这些准备。包括耗材的处理、试剂的配置,无菌检验等等。玻璃器皿的清洗,对于玻璃器皿(细胞瓶、装营养液的瓶子、小青霉素瓶等)要用洗衣粉刷干净(注意死角),然后冲干净。用酸液浸泡 24 h 以上,之后用清水冲洗数遍,除去残留酸液。瓶子之类,冲洗过程要使劲摇晃。试剂配置,细胞培养用的液体一般使用双蒸以上的水即可。并注意 pH 值的调节。无菌检验,主要采用过滤除菌:如胰酶、抗生素、G-418 溶液、各类培养基、丙酮酸钠、谷氨酰胺等。有些可以采用高压灭菌:如 PBS、D-Hank's等。不同细胞对培养基的要求是不同的,要根据自己的细胞要求使用。至于实验操作,脑子里时刻提醒自己“无菌”;实验进行前,超净台以紫外灯照射 30 分钟灭菌,以 70 % ethanol 擦拭无菌操作台面,并开启超净工作台风扇运转数分钟后,才开始实验操作。每次操作只处理一株细胞株,避免细胞间交叉污染。实验完毕后,将实验物品带出工作台,再次以 70 % ethanol 擦拭无菌操作台面。实验用品以 70% 乙醇擦拭后才带入无菌操作台内。实验操作应在中央无菌区域,一般不要再边缘区域操作。你最好做到每天都去探望探望它们,看看他们的成长情况1、检查培养液颜色与透明度的变化,颜色变黄,说明PH值下降;变红或紫红色,说明PH值上升,细胞生长停滞、死亡,一般生长稳定的细胞2-3天换液一次,...
发布时间: 2019 - 08 - 06
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