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(1)复制方法  体重2.5~3.0kg健康成年新西兰兔,经耳缘按1ml/kg体重的剂量静脉注射3%戊巴比妥钠麻醉,用2%利多卡因2ml做球周麻醉,用开睑器开睑。显微镜下于兔眼角巩缘处做一约1.5mm之隧道切口。将5号针头尖端弯成90°角,距离其10mm处向针头尖端方向再弯一个钝角。针头装有眼用平衡液的5ml注射器,由隧道进入前房,边注水维持前房,边钩取破坏角膜内皮层。显微镜下可见内皮层脱落,脱落范围占角膜内皮面大。行前房冲洗,以冲出部分内皮碎片,然后边注水边退针。术后点用0.5%的氯霉素眼药水,每日4次以预防感染。(2)模型特点  术后实验兔可发生大泡性角膜病变,范围较高。肉眼及显微镜下观察可见角膜明显水肿,呈灰白色混浊,表面呈大泡状。组织学切片显示,大泡性角膜病变眼角膜明显增厚,上皮细胞有水肿、退变、间隙积液、大泡形成、表面不规则、少量炎症细胞浸润,角膜基质排列紊乱,细胞间隙明显增宽,后期近角膜上皮侧有新生血管形成。因此说明,通过破坏兔眼角膜内皮层的方法建立大泡性角膜病变动物模型,方法简便、实用,成功率高。(3)比较医学  大泡性角膜病变的致盲性眼病之一。角膜内皮凭借其屏障及泵的功能在维持角膜脱水状态、透明性及正常厚度中起着十分重要的作用。当角膜内皮细胞损伤达到一定的临界值时,残存的内皮细胞就不能代偿其功能,就会出现角膜实质层水肿、透明度...
发布时间: 2019 - 08 - 16
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低温冷冻脑损伤模型是一种类似于人脑挫伤的动物模型,主要为血管源性脑水肿,是常用的颅脑损伤实验模型。该模型具体制作方法:手术前大鼠禁食l晚,不禁水。动物称重后,用2%硫喷妥钠(40mg/kg体重)腹腔注射麻醉成功后,动物头部固定于江湾Ⅰ型C立体定向仪上,头部备皮,安尔碘消毒后,于中线切开头皮,剥离骨膜,在冠状缝后、人字缝前、矢状缝右侧显微手术电钻颅骨钻孔。骨窗直径为5mm,用于致伤和行颅内压监测。将自制冷冻杯置入液氮中1min预冷,盛入液氮后迅速从液氮罐中取出,立即盖上杯盖,用冷冻杯底部与硬脑膜充分接触15s,冷冻处硬脑膜和邻近颅骨由白色恢复至周围组织同样颜色的时间一般为8~10s,表示冷冻良好。正常对照组动物不做麻醉和手术处理;假冻伤组与冻伤组同样行麻醉和开颅手术,但不冷冻,以盛有37℃生理盐水的冷冻杯与硬脑膜充分接触15s行假冷冻。术后进行颅内压的测定:假冻伤组和冻伤组各取6只动物,在上述操作结束后立即监测颅内压。将ALC-MPA型多道生物信号分析系统的颅内压探头由骨窗处向前方放置于颅骨下硬脑膜外,然后将硬脑膜及骨窗周围颅骨外板和软组织用无菌棉球拭干,用医用耳脑胶封闭颅骨与硬脑膜之间的缝隙,骨瓣复位。骨窗边缘的颅骨外板上钻一直径约1mm微孔,固定小螺丝钉1枚,最后用自凝牙托水泥封闭骨窗,在此过程中,务必做到严密封闭。颅内压持续监测6h,每间隔1h取2min的平均值作为测得值记录,...
发布时间: 2019 - 08 - 14
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(1)复制方法  用体重为200~220g的雄性Wistar大鼠,经腹腔按戊巴比妥钠30mg/kg体重的剂量注射麻醉后,动物仰卧固定于手术板上。动物腹部术区常规消毒与去毛,在下腹部作一约2cm切口,进腹后分离左肾动脉,用无损伤微动脉夹夹闭左肾动脉60min后恢复灌注,同时切除右肾,分别按不同灌注时间(1, 3, 6, 24h)再分为4组。治疗组为再灌注前5min静脉注射,另设假手术组(不阻断肾血流)作为对照,分别按相应时间点采血和取肾。全自动生化分析仪测定血清尿素氮(BUN)和肌酐(Cr)水平。肾组织常规石蜡切片HE染色,光镜下观察肾组织病理学改变。(2)模型特点  缺血再灌注(ischemia-reperfusion, IR)后,大鼠肾组织中P选择素明显表达,且MDA含量增加和 SOD活性下降,出现明显的细胞凋亡及组织学病理改变。再灌注24h,实验组血清BUN与Cr明显高于假手术组;再灌注1h后,肉眼可见实验组肾皮质较苍白,肾髓质瘀血色深暗,光镜下肾小管上皮细胞肿胀,出现不同程度变性和坏死,间质充血水肿及炎细胞浸润。大鼠肾血流被阻断恢复灌流后肾功能减退,肾组织发生了显著的病理改变,肾小管上皮细胞明显肿胀,不同程度地出现变性和坏死,肾间质充血水肿并伴有炎症细胞浸润。缺血再灌注后可造成肾内氧自由基大量产生,内源性抗氧化物消耗以至清除氧自由基能力明显下降,加重了肾脏...
发布时间: 2019 - 08 - 13
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